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| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
CD79B CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h2) | sc-401760-KO-2 | 20 µg | $397.00 | |||
CD79B HDR Plasmid (h2) | sc-401760-HDR-2 | 20 µg | $445.00 |
CD79B (Igβ) kodiert eine zentrale Signaleinheit des B‑Zell-Antigenrezeptor(BCR)-Komplexes, die mit CD79A ein Heterodimer bildet und die Antigenbindung mit der intrazellulären Signalweiterleitung koppelt. Sein immunrezeptor-tyrosinbasiertes Aktivierungsmotiv (ITAM) wird phosphoryliert, um SYK zu rekrutieren und BCR-abhängige Signalwege weiterzuleiten, darunter BTK–PLCγ2–Ca²⁺-Flux, PI3K–AKT sowie NF‑κB- und MAPK-Signalisierung, die Aktivierung, Überleben und Differenzierung von B‑Zellen prägen. Störungen der CD79B-abhängigen Signalübertragung werden häufig im Zusammenhang mit veränderten Dynamiken der BCR-Signalgebung und der Biologie der B‑Zell-Linie untersucht. CD79B ist daher ein nützliches Ziel, um die Signaltransduktion des Antigenrezeptors und nachgeschaltete Transkriptionsprogramme in humanen B‑Zellen und B‑zellabgeleiteten Modellsystemen zu analysieren.
CD79B CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des CD79B-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des CD79B-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das CD79B HDR-Plasmid (h2) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte CD79B Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem CD79B CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des CD79B-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.