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CAML CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403690-ACT | 20 µg | $397.00 |
CAMLG kodiert den calcium-modulierenden Cyclophilin-Liganden (CAML), ein integrales Membranprotein des endoplasmatischen Retikulums, das die intrazelluläre Ca²⁺-Signalübertragung mit der Biogenese von Membranproteinen und Programmen zum Zellüberleben koppelt. CAML ist an rezeptorvermittelten sowie speicheroperierten Calcium-Einstromprozessen beteiligt und wurde mit der Regulation der Lymphozytenaktivierung, der Kontrolle der Apoptose und der Proteostase über ER-assoziierte Signalwege in Verbindung gebracht. Durch die Beeinflussung calciumabhängiger transkriptioneller Antworten und von Stress-Signalwegen kann CAML Proliferation und die Funktion von Immunzellen modulieren. Eine Dysregulation der CAMLG-Expression oder der durch CAML vermittelten Calciumhomöostase wurde in experimentellen Modellen mit veränderten Überlebenssignalen und onkogenen Phänotypen assoziiert, was die Relevanz für mechanistische Studien in der Krebs- und Immunbiologie unterstreicht.
CAML Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CAMLG-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CAML Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CAMLG-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CAMLG-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CAML-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CAMLG-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CAML-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CAML-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CAMLG-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.