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| Nom du produit | Ref. Catalogue | COND. | Prix HT | QTÉ | Favoris | |
Plasmide Double Nickase (m) Acid Ceramidase | sc-419216-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Plasmide Double Nickase (m2) Acid Ceramidase | sc-419216-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Le gène murin Asah1 code la céramidase acide, une hydrolase lysosomale qui désacyle la céramide en sphingosine et en acides gras libres, contrôlant ainsi l’équilibre entre la signalisation de la céramide et celle du sphingosine-1-phosphate. En régulant le renouvellement des sphingolipides, la céramidase acide influence la composition membranaire, l’homéostasie endolysosomale, l’autophagie et des voies de réponse au stress qui croisent l’apoptose et la signalisation inflammatoire. La perturbation du catabolisme de la céramide dépendant d’ASAH1 dérègle l’élimination des lipides lysosomaux et modifie les réserves de sphingolipides bioactifs, des processus impliqués dans la neurodégénérescence et des phénotypes systémiques de stockage lipidique. Asah1 constitue donc un nœud clé pour l’étude de la fonction lysosomale et des réseaux de signalisation pilotés par les sphingolipides dans des modèles cellulaires murins et in vivo.
Acid Ceramidase Le plasmide double nickase (m) se compose d'une paire de plasmides appariés, conçus pour une édition hautement spécifique du locus Asah1 dans les lignées cellulaires mouse. Chaque plasmide exprime une nickase Cas9 D10A et un sgRNA distinct ciblant des brins d'ADN opposés au sein de Asah1. Lorsqu'elles sont dirigées vers des sites adjacents sur des brins d'ADN opposés, les deux nickases génèrent des cassures simple brin décalées qui, ensemble, produisent une cassure double brin décalée, nécessitant une activité coordonnée sur la cible de la part des deux guides. La cassure d'ADN qui en résulte est résolue par les voies de réparation cellulaires endogènes, le plus souvent par jonction non homologue (NHEJ), ce qui conduit à des insertions ou des délétions qui perturbent la fonction de Asah1. En nécessitant l'engagement de deux ARNsg au locus cible, l'approche par double nick améliore la spécificité de l'édition et offre une stratégie CRISPR complémentaire pour les applications où un contrôle supplémentaire de la précision du ciblage est souhaité.
Afin de faciliter l'identification efficace des cellules éditées, un plasmide code pour la GFP permettant la visualisation par fluorescence des populations transfectées, tandis que le plasmide compagnon porte un gène de résistance à la puromycine pour la sélection antibiotique. Ensemble, ces caractéristiques favorisent l'enrichissement efficace des populations co-transfectées et simplifient la validation des clones présentant une perturbation de Asah1.
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.