Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
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VAMP-2 Double Nickase Plasmid (m): sc-423650-NIC
- Zielspezies: mouse
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- Das VAMP-2 Double Nickase Plasmid (m) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
- gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
- Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
- VAMP-2 Double-Nickase-Plasmid (m) und VAMP-2 Double-Nickase-Plasmid (m2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf Vamp2 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
- Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: VAMP-2: sc-69706
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
VAMP-2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423650-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
VAMP-2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423650-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Vamp2 kodiert das vesikelassoziierte Membranprotein 2 (VAMP‑2; Synaptobrevin‑2), ein zentrales v‑SNARE, das mit t‑SNAREs wie SNAP25 und Syntaxinen zusammenwirkt, um bei der regulierten Exozytose die Membranfusion anzutreiben. In Neuronen und neuroendokrinen Zellen der Maus ist VAMP‑2 für das Andocken synaptischer Vesikel und die Neurotransmitterfreisetzung essenziell; zudem trägt es zu Schritten des Vesikeltransports bei, die mit dem Recycling von Endosomen zur Plasmamembran verknüpft sind. Über Zyklen des Auf- und Abbaus des SNARE‑Komplexes, koordiniert durch NSF/α‑SNAP, hilft VAMP‑2, den präsynaptischen Vesikelumsatz und die reizgekoppelte Sekretion aufrechtzuerhalten. Veränderte SNARE‑Funktion und die Dynamik der Vesikelfusion werden umfassend im Kontext neuroentwicklungs- und neurodegenerationsbezogener Mechanismen sowie metabolischer Phänotypen untersucht, die sekretionsabhängige Signalwege betreffen.
VAMP-2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Vamp2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Vamp2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Vamp2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Vamp2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.