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TMPRSS11A Double Nickase Plasmid (h) | sc-415530-NIC | 20 µg | $410.00 |
TMPRSS11A kodiert eine Typ-II-Transmembran-Serinprotease, die an epithelialen Oberflächen exprimiert wird und dort zur perizellulären Proteolyse sowie zum proteaseabhängigen Umbau des extrazellulären Milieus beiträgt. Durch die regulierte Spaltung von Proteinsubstraten an der Zellmembran kann TMPRSS11A die Homöostase der epithelialen Barriere, Differenzierungsprogramme und entzündliche Signalkaskaden beeinflussen, die mit mukosalen Antworten verknüpft sind. Eine veränderte Expression von TMPRSS11A wurde in Epithelien der Atemwege und des Gastrointestinaltrakts beschrieben und im Kontext epithelialer Stresszustände sowie tumorassoziierter Proteasenetzwerke untersucht. Diese Eigenschaften machen TMPRSS11A zu einem geeigneten Ziel für die Untersuchung der Funktion membranverankerter Proteasen, proteolytischer Signalgebung und epithelialer Biologie.
TMPRSS11A Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TMPRSS11A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TMPRSS11A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TMPRSS11A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TMPRSS11A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.