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TLR2 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400267-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
TLR2 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400267-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Humanes TLR2 kodiert den Toll-like-Rezeptor 2, einen Mustererkennungsrezeptor, der bakterielle Lipoproteine und andere mikrobielle Komponenten in Zusammenarbeit mit Heterodimer-Partnern wie TLR1 und TLR6 erkennt. Nach Ligandenbindung signalisiert TLR2 hauptsächlich über MYD88-abhängige Signalwege und aktiviert IRAK–TRAF6-Kaskaden, was NF-κB- und MAPK-Signalwege sowie die Induktion proinflammatorischer Zytokine und Chemokine antreibt. Die TLR2-Aktivität prägt die angeborene Immunaktivierung, die Reifung dendritischer Zellen und die Wechselwirkung mit der adaptiven Immunität, mit nachgeschalteten Effekten auf Interferon- und inflammasomassoziierte Programme in einem kontextabhängigen Maß. Eine fehlregulierte TLR2-Signalgebung wurde mit chronisch-entzündlichen Erkrankungen, infektionsassoziierter Immunpathologie und tumorassoziierter Entzündung in Verbindung gebracht, was TLR2 zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien der Immunregulation macht.
TLR2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen TLR2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
TLR2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des TLR2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der TLR2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen TLR2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native TLR2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von TLR2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des TLR2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem TLR2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.