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TAZ Double Nickase Plasmid (m) | sc-430168-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TAZ Double Nickase Plasmid (m2) | sc-430168-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Maus-Wwtr1 kodiert den transkriptionellen Koaktivator TAZ, einen zentralen nachgeschalteten Effektor des Hippo-Signalwegs, der mechanische Signale, Zelldichte und Zytoskelettdynamik integriert, um Genprogramme zu regulieren, die Proliferation, Überleben und Differenzierung steuern. Über Interaktionen mit Transkriptionsfaktoren der TEAD-Familie koordiniert TAZ die epithelial–mesenchymale Plastizität, das Verhalten von Stamm-/Vorläuferzellen und die Kontrolle der Organgröße. Eine fehlregulierte TAZ-Aktivität ist mit veränderter Gewebehomöostase und onkogenähnlichen Transkriptionszuständen verbunden, wodurch Wwtr1 zu einem häufig genutzten Knotenpunkt für die Untersuchung von Wachstums-Kontrollnetzwerken wird. In Maus-Systemen wird die Störung von Wwtr1/TAZ häufig eingesetzt, um Signalweg-Crosstalk in der Entwicklung und kontextabhängige Transkriptionsregulation zu analysieren.
TAZ Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Wwtr1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Wwtr1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Wwtr1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Wwtr1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.