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Stat3 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423176-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Stat3 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423176-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen *Stat3* kodiert den Signal Transducer and Activator of Transcription 3 (STAT3), einen latenten Transkriptionsfaktor, der nachgeschaltet von Zytokin- und Wachstumsfaktorrezeptoren aktiviert wird. Nach der Phosphorylierung durch JAK-Kinasen oder rezeptorassoziierte Tyrosinkinasen dimerisiert STAT3 und transloziert in den Zellkern, wo es Programme reguliert, die Proliferation, Überleben, Entzündung und stammzellähnliche Zellzustände steuern. Die STAT3-Signalübertragung integriert Signale von Zytokinen der IL-6-Familie und überschneidet sich mit Signalwegen wie NF-κB, PI3K–AKT und MAPK, um die Immun- und Gewebehomöostase zu formen. Eine fehlregulierte STAT3-Aktivität wird häufig in Modellen chronischer Entzündung, Immunstörungen, Fibrose und onkogener Transformation untersucht, um kontextspezifische transkriptionelle und epigenetische Effekte zu definieren.
Stat3 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Stat3-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Stat3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Stat3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Stat3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.