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| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
SSTR2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-423041 | 20 µg | $397.00 | |||
SSTR2 HDR Plasmid (m) | sc-423041-HDR | 20 µg | $445.00 |
Sstr2 kodiert den Somatostatinrezeptor 2 (SSTR2), einen Gi/o-gekoppelten G‑Protein-gekoppelten Rezeptor, der Somatostatin-Signale vermittelt, um die zelluläre Erregbarkeit und die sekretorische Aktivität zu dämpfen. Nach Ligandenbindung hemmt SSTR2 die Adenylylcyclase und reduziert so die cAMP/PKA-Signalstärke, moduliert die Aktivität von Ionenkanälen und kann MAPK/ERK-Signalkaskaden sowie Phosphotyrosin-Phosphatase-Wege aktivieren, um Proliferation und Differenzierung zu beeinflussen. In Mausgeweben trägt Sstr2 zur neuroendokrinen Regulation und zur Freisetzung gastrointestinaler Hormone bei und integriert dabei parakrine Kontrolle endokriner und neuronaler Schaltkreise. Eine dysregulierte Somatostatin–SSTR2-Signalübertragung wurde in relevanten experimentellen Kontexten mit veränderter neuroendokriner Funktion und Tumorbiologie in Verbindung gebracht, was ihren Einsatz in mechanistischen Krankheitsmodellen unterstützt.
SSTR2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Sstr2-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Sstr2-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das SSTR2 HDR-Plasmid (m) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Sstr2 Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem SSTR2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Sstr2-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.