Date published: 2026-7-14

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Shrm CRISPR Activation Plasmid (h): sc-403640-ACT

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Shrm CRISPR Activation Plasmid (h) ist ein Transkriptionsaktivierungs System (SAM) welches für die gezielte Verstärkung der Genexpression bestimmt ist
  • Shrm CRISPR Aktivierungsplasmide (h) bestehen aus 3 Plasmiden im Massenverhältnis 1:1:1: ein Plasmid kodiert für die deaktivierte Cas9 (dCas9) Nuklease (D10A und N863A) fusioniert an die Transaktivierungsdomaine VP64 sowie ein Gen für die Blasticidin Resistenz; ein zweites Plasmid kodierend für das MS2-p65-HSF1 Fusionsprotein sowie ein Gen für die Hygromycin Resistenz; ein drittes Plasmid kodierd für die Ziel-spezifische 20 nt guide RNA fusioniert an zwei MS2 RNA Aptamere sowie ein Gen für die Puromycin Resistenz.
  • Der entstehende SAM-Komplex (Mediator-Komplex zur synergistischen Gen-Aktivierung) bindet eine sequenzspezifische Region 200-250 nt upstream (in 5'-Richtung) des Transkriptionsstartsignals und rekrutiert dort ständig Transkriptionsfaktoren für eine verstärkte Gen-Aktivierung und Gen-Expression.
  • Die vom Shrm CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) und vom Shrm CRISPR-Aktivierungsplasmid (h2) kodierten gRNAs zielen auf unterschiedliche regulatorische Regionen stromaufwärts der SHROOM3-Transkriptionsstartstelle ab. Eines oder beide Designs sind möglicherweise verfügbar
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    Shrm CRISPR Activation Plasmid (h)

    sc-403640-ACT
    20 µg
    $397.00

    Humanes SHROOM3 kodiert Shrm, einen aktinassoziierten Regulator der Zellmorphologie, der Rho-Kinase-Signalwege als Gerüstprotein organisiert, um apikale Einschnürung und Zytoskelett-Remodeling zu fördern. Shrm trägt zur Architektur epithelialer Gewebe, zur Zellpolarisation und zu koordinierten morphogenetischen Bewegungen während der Entwicklung bei, indem es die Aktomyosin-Kontraktilität mit Membrankrümmung koppelt. Eine veränderte SHROOM3-Aktivität wurde mit Defekten in der epithelialen Organisation und in Entwicklungsprozessen in Verbindung gebracht, und genetische Variation in SHROOM3 ist mit nierenbezogenen Merkmalen und Krankheitsanfälligkeit assoziiert. Diese Funktionen machen SHROOM3 zu einem geeigneten Ansatzpunkt für die Untersuchung von Zytoskelettdynamik, Mechanotransduktion und polaritätsabhängiger Signalübertragung in relevanten Zellmodellen.

    Shrm Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SHROOM3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.

    Shrm Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SHROOM3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.

    Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SHROOM3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Shrm-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SHROOM3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Shrm-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Shrm-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SHROOM3-Ausdruck.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.