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PSK2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-418247-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Humanes TAOK1 (TAO-Kinase 1), auch als PSK2 bezeichnet, kodiert eine Serin/Threonin-Kinase, die stromaufwärts der MAPK-Signalübertragung wirkt, insbesondere der stressaktivierten p38- und JNK-Kaskaden, um Zytoskelettdynamik, Zentrosomenorganisation und mikrotubuliabhängige Prozesse zu koordinieren, die für Mitose und neuronale Entwicklung wichtig sind. Die TAOK1-Aktivität integriert Signale aus zellulären Stress- und Polaritätswegen und beeinflusst Phosphorylierungsnetzwerke, die Apoptose, Migration und Neuritenauswachsung regulieren. Genetische und funktionelle Studien haben eine Fehlregulation von TAOK1 mit neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen und einer krebsassoziierten Umverdrahtung von Signalwegen in Verbindung gebracht, was seine Relevanz für Modelle einer veränderten MAPK-Kontrolle und eines durch das Zytoskelett getriebenen Zellverhaltens unterstreicht. Die Geneditierung von TAOK1 ermöglicht die mechanistische Untersuchung kinaseabhängiger Signalweg-Kreuzregulation, die Kartierung von Phosphorylierungssubstraten sowie die Erzeugung isogener humaner Zellsysteme, um Genotyp-Phänotyp-Beziehungen in krankheitsrelevanten Kontexten zu erforschen.
PSK2 Das Double-Nickase-Plasmid (h2) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TAOK1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TAOK1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TAOK1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TAOK1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.