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| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
PP2A-B56-β CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h2) | sc-403233-KO-2 | 20 µg | $397.00 | |||
PP2A-B56-β HDR Plasmid (h2) | sc-403233-HDR-2 | 20 µg | $445.00 |
PPP2R5B kodiert die regulatorische PP2A-Untereinheit B56β, ein Mitglied der B56/B′-Familie, die die Substratauswahl und subzelluläre Zielsteuerung der Proteinphosphatase 2A (PP2A) bestimmt. Durch die Modulation der Dephosphorylierung zentraler Signal-Knotenpunkte beeinflusst PP2A‑B56β den Zellzyklusverlauf, die Kontrolle des mitotischen Checkpoints, DNA-Schadensantworten und die Dynamik des Zytoskeletts, mit nachgeschalteten Effekten auf Signalwege wie AKT/MAPK und Wnt/β‑Catenin. Eine veränderte Zusammensetzung des PP2A-Holoenzyms, einschließlich Verschiebungen in der Nutzung von B56-Untereinheiten, wurde mit dysregulierten Phosphorylierungsnetzwerken in der Krebs- und Neurobiologie in Verbindung gebracht. PPP2R5B wird daher häufig untersucht, um die phosphataseabhängige Kontrolle der Signaltreue und der zellulären Homöostase zu analysieren.
PP2A-B56-β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des PPP2R5B-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des PPP2R5B-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das PP2A-B56-β HDR-Plasmid (h2) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte PPP2R5B Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem PP2A-B56-β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des PPP2R5B-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.