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PABP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400688-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das menschliche PABPC1 kodiert das Poly(A)-bindende Protein (PABP), einen zentralen Regulator des zytoplasmatischen mRNA‑Stoffwechsels, der an 3′‑Poly(A)-Schwänze bindet, um die Initiation der Translation zu fördern und Transkripte zu stabilisieren. Durch Interaktionen mit Translationsinitiationsfaktoren und Komponenten der mRNA‑Abbaumaschinerie koordiniert PABP die Zirkularisierung der mRNA, die Translationseffizienz und den deadenylierungsabhängigen Abbau. PABPC1 trägt außerdem zur Dynamik von Stressgranula und Processing Bodies bei und verknüpft so die Kontrolle der Translation mit zellulären Stressantworten. Eine veränderte PABP‑Aktivität und PABPC1‑Expression wurden mit fehlregulierten Genexpressionsprogrammen in Verbindung gebracht, wie sie bei Krebs und in Virus‑Wirt‑Interaktionen beobachtet werden, was PABPC1 für Studien zur onkogenen Signalübertragung und zur Modulation der angeborenen Immunantwort relevant macht.
PABP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PABPC1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PABP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PABPC1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PABPC1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PABP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PABPC1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PABP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PABP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PABPC1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.