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p38 alpha MAPK14 Double Nickase Plasmid (m) | sc-424051-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
p38 alpha MAPK14 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-424051-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen *Mapk14* kodiert p38α (MAPK14), eine stressaktivierte Serin/Threonin-Kinase, die entzündliche Zytokine, oxidativen Stress und Umweltreize integriert und dadurch zelluläre Antworten formt. p38α wirkt in der MAPK-Signalkaskade und reguliert Phosphorylierungsprogramme, die über nachgeschaltete Zielproteine wie MAPKAPK2/3 sowie Transkriptionsfaktoren einschließlich ATF2 und CREB Transkription, mRNA-Stabilität, Apoptose, Differenzierung und Zellzyklus-Kontrollpunkte steuern. In immunologischen und stromalen Kompartimenten trägt MAPK14 zur Zytokinproduktion und zur angeborenen Immun-Signalgebung bei und verknüpft zelluläre Stressantworten mit der Gewebehomöostase. Eine fehlregulierte p38α-Aktivität wurde mit entzündungsassoziierter Pathophysiologie, neuroinflammatorischen Prozessen und der Biologie des Tumormikromilieus in Verbindung gebracht, was ihren Einsatz in mechanistischen Studien über vielfältige murine Krankheitsmodelle hinweg unterstützt.
p38 alpha MAPK14 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Mapk14-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Mapk14 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Mapk14-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Mapk14-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.