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NDUFB5 Double Nickase Plasmid (h) | sc-410902-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
NDUFB5 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-410902-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
NDUFB5 kodiert eine akzessorische Untereinheit des mitochondrialen Atmungskettenkomplexes I (NADH:Ubiquinon-Oxidoreduktase), die zu einer korrekten Assemblierung des Komplexes und zum Elektronentransfer von NADH auf Ubiquinon beiträgt. Über seine Rolle in der oxidativen Phosphorylierung beeinflusst NDUFB5 die Aufrechterhaltung des mitochondrialen Membranpotenzials, die ATP-Produktion und das zelluläre Redoxgleichgewicht, mit nachgeschalteten Effekten auf die Homöostase reaktiver Sauerstoffspezies. Eine veränderte Funktion von Komplex I ist mit mitochondrialem bioenergetischem Stress, metabolischer Umprogrammierung und erhöhter Verwundbarkeit von Geweben mit hohem Energiebedarf verbunden, wodurch NDUFB5 ein relevanter Ansatzpunkt für die Untersuchung mitochondrialer Dysfunktionen ist. Forschung zu NDUFB5 überschneidet sich häufig mit Signalwegen, die die mitochondriale Proteostase, Mitophagie und nukleär-mitochondriale Signalantworten auf eine beeinträchtigte Atmungskettenfunktion steuern.
NDUFB5 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des NDUFB5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von NDUFB5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die NDUFB5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit NDUFB5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.