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Mig-6 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401922-ACT | 20 µg | $397.00 |
ERRFI1 kodiert das mitogeninduzierbare Gen 6 (Mig-6), ein induzierbares Adapterprotein, das als negativer Rückkopplungsregulator der EGFR/ERBB-Familien-Signalgebung wirkt, indem es die Rezeptor-Kinaseaktivität und die nachgeschaltete Signalstärke der MAPK/ERK- und PI3K/AKT‑Signalwege begrenzt. Durch die Modulation wachstumsfaktorgetriebener Proliferation, Differenzierung und Stressantworten trägt Mig-6 zur homöostatischen Kontrolle epithelialer und mesenchymaler Zellprogramme bei. Eine veränderte Expression oder Funktion von ERRFI1 wurde mit der fehlregulierten ERBB-Signalgebung in der Krebsbiologie in Verbindung gebracht und zudem im Kontext inflammatorischer Signalwege, Gewebeumbau und entwicklungsbiologischer Phänotypen untersucht. Als Knotenpunkt, der Signale von Rezeptor-Tyrosinkinasen integriert, wird Mig-6 in Studien zu Signalabschwächung, Feedback-Kontrolle und Wachstumsfaktorabhängigkeit routinemäßig analysiert.
Mig-6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ERRFI1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Mig-6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ERRFI1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ERRFI1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Mig-6-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ERRFI1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Mig-6-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Mig-6-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ERRFI1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.