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LONP1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-428748-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LONP1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-428748-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Lonp1 kodiert LONP1, eine ATP-abhängige Serinprotease/Chaperon, die in der mitochondrialen Matrix lokalisiert ist und die mitochondriale Proteostase steuert, indem sie geschädigte, fehlgefaltete und oxidierte Proteine refaltet oder abbaut. Durch die Kontrolle des Umsatzes von Komponenten der Atmungskette und regulatorischen Faktoren unterstützt LONP1 die oxidative Phosphorylierung, die Erhaltung der mitochondrialen DNA und stressadaptive Programme wie die mitochondriale UPR (Unfolded Protein Response). Eine Störung der LONP1-Funktion beeinträchtigt die mitochondriale Dynamik, erhöht die Menge reaktiver Sauerstoffspezies und kompromittiert die bioenergetische Homöostase, wodurch dieser Signalweg mit Phänotypen mitochondrialer Dysfunktion verknüpft ist, die für Neurodegeneration, kardiometabolischen Stress und krebsassoziiertes metabolisches Remodeling relevant sind. Das Mausprotein Lonp1 ist daher ein zentraler Knotenpunkt zur Untersuchung von Qualitätskontrollmechanismen, die Proteolyse, ATP-abhängiges Remodeling und Redox-Signalgebung in Mitochondrien integrieren.
LONP1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Lonp1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Lonp1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Lonp1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Lonp1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.