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IL-3Rα CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-437304-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
IL-3Rα CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-437304-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
IL3RA kodiert die Alpha-Kette des Interleukin-3-Rezeptors (IL-3Rα/CD123), eine Zytokinrezeptor-Untereinheit, die die Ligandenbindungsspezifität vermittelt und zusammen mit der gemeinsamen Beta-Kette die IL-3–abhängige Signalübertragung einleitet. Die Bindung an IL-3Rα fördert die nachgeschaltete Aktivierung der JAK/STAT-, PI3K/AKT- und MAPK/ERK-Signalwege und unterstützt damit das Überleben und die Proliferation hämatopoetischer Zellen sowie die Differenzierung in die myeloische Linie. Die IL3RA-Expression ist in hämatopoetischen Vorläuferzellen und ausgewählten Immunzell-Subpopulationen erhöht, was IL3RA zu einem nützlichen Marker für die Untersuchung zytokingesteuerter Programme und der Dynamik des Rezeptor-Transports macht. Eine fehlregulierte IL3RA-Signalübertragung und eine veränderte Rezeptorhäufigkeit wurden mit aberranter Myelopoese und entzündlichen Immunphänotypen in Verbindung gebracht, was mechanistische Untersuchungen in krankheitsrelevanten Zellmodellen nahelegt.
IL-3Rα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL3RA-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-3Rα Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL3RA-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL3RA-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-3Rα-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL3RA-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-3Rα-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-3Rα-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL3RA-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.