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Histone Deacetylase 5 (HDAC5) Double Nickase Plasmid (h) | sc-400659-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Histone Deacetylase 5 (HDAC5) Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400659-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
HDAC5 kodiert die Histon-Deacetylase 5, eine HDAC der Klasse IIa, die die Zugänglichkeit von Chromatin und transkriptionelle Programme moduliert, indem sie mit Korepressor-Komplexen zusammenwirkt und Histon- sowie Nicht-Histon-Substrate deacetyliert. Ihre Aktivität wird dynamisch durch phosphorylierungsabhängiges nukleo-zytoplasmatisches Shuttling reguliert, wodurch Calcium- und Kinase-Signale mit der Kontrolle der Genexpression verknüpft werden. HDAC5 ist ein zentraler Knotenpunkt in Signalwegen, die die Muskeldifferenzierung, neuronale Plastizität und stressresponsive Transkription steuern, einschließlich MEF2-abhängiger Netzwerke. Eine fehlregulierte HDAC5-Funktion und -Lokalisation wurde mit aberranten epigenetischen Zuständen in Verbindung gebracht, die mit Krebsbiologie, kardialem Remodeling und neuropsychiatrischen Phänotypen assoziiert sind, was ihren Einsatz in mechanistischen Studien zur Chromatinregulation unterstützt.
Histone Deacetylase 5 (HDAC5) Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HDAC5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HDAC5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HDAC5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HDAC5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.