Plásmido Doble Nickase (h) FRAS1: sc-407225-NIC
- Especies Diana: human
- 20 µg de plásmido de ADN purificado listo para la trasfección; suficiente para 20 transfecciones máximo
- El Plásmido Double Nickase (h)FRAS1 consisten en un par de plásmidos cada uno codificando una nucleasa Cas9 mutada D10A y una guia de ARN de 20 nucleótidos (gRNA) diseñados para una mayor especificidad que el homologo CRISPR/Cas9 KO
- Las secuencias de gRNA tienen una diferencia de unas 20 pb para permitir un corte doble mediado por Cas9 en el ADN que imita el doble corte
- Uno de los plásmidos contiene el gen de resistencia a puromicina para la selección y el otro el marcado GFP para confirmar visualmente la transfección
- El plásmido de doble nickasa FRAS1 (h) y el plásmido de doble nickasa FRAS1 (h2) codifican diseños distintos de pares de gRNA dirigidos a FRAS1. Puede que esté disponible uno o ambos diseños
Información sobre pedidos
| Nombre del producto | Número de catálogo | UNIDAD | Precio | CANTIDAD | Favoritos | |
Plásmido Doble Nickase (h) FRAS1 | sc-407225-NIC | 20 µg | $410.00 |
FRAS1 codifica una proteína asociada a la matriz extracelular que se localiza en zonas de la membrana basal y favorece la adhesión epitelio‑mesenquimatosa durante la morfogénesis embrionaria. Participa en el anclaje y la estabilización de estructuras epiteliales, influyendo en procesos como la integridad cutánea, el desarrollo craneofacial y la morfogénesis renal mediante interacciones célula‑matriz. La alteración de FRAS1 se asocia con fenotipos del espectro del síndrome de Fraser y con anomalías congénitas, lo que pone de relieve su importancia en vías del desarrollo que regulan la organización tisular. Como proteína matricial de gran tamaño, FRAS1 se estudia con frecuencia en el contexto del ensamblaje de la membrana basal, la formación de la barrera epitelial y los mecanismos subyacentes a malformaciones del desarrollo.
FRAS1 El plásmido de doble nicasa (h) consiste en un par de plásmidos emparejados diseñados para la edición de alta especificidad del locus FRAS1 en líneas celulares human. Cada plásmido expresa una nicasa Cas9 D10A y un ARN guía específico (sgRNA) dirigido a cadenas de ADN opuestas dentro de FRAS1. Cuando se dirigen a sitios adyacentes en cadenas de ADN opuestas, las dos nicasas generan cortes en cadena simple desplazados que, juntos, producen una rotura de doble cadena escalonada, lo que requiere una actividad coordinada sobre el objetivo por parte de ambas guías. La rotura de ADN resultante se resuelve mediante vías de reparación celular endógenas, más comúnmente a través de la unión de extremos no homólogos (NHEJ), lo que da lugar a inserciones o deleciones que alteran la función de FRAS1. Al requerir la participación de dos ARN guía en el locus diana, el enfoque de doble corte mejora la especificidad de la edición y proporciona una estrategia CRISPR complementaria para aplicaciones en las que se desea un control adicional sobre la precisión de la orientación.
Para facilitar la identificación eficiente de las células editadas, un plásmido codifica GFP para la visualización fluorescente de las poblaciones transfectadas, mientras que el plásmido complementario lleva un gen de resistencia a la puromicina para la selección con antibióticos. En conjunto, estas características facilitan el enriquecimiento eficiente de las poblaciones cotransfectadas y simplifican la validación de los clones con FRAS1 alterado.
Sólo para uso en investigación. No destinado a uso diagnóstico o terapéutico.