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DOCK 8 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401727-NIC | 20 µg | $410.00 |
DOCK8 kodiert „Dedicator of Cytokinesis 8“, einen atypischen Guanin-Nukleotid-Austauschfaktor, der Rho-Familien-GTPasen reguliert, um den Umbau des Aktinzytoskeletts, die Zellpolarität und die Signalintegration nachgeschaltet an Immunrezeptoren zu koordinieren. DOCK8 unterstützt die Migration von Lymphozyten, die Ausbildung der immunologischen Synapse und das Überleben von Zellen und verknüpft dabei zytoskelettale Dynamik mit Signalwegen, die Adhäsion und vesikulären Transport steuern. Loss-of-function-Varianten stören die zytoskelettale Kontrolle in hämatopoetischen Zellen und sind mit Phänotypen primärer Immundefizienz assoziiert, die durch beeinträchtigte antivirale Antworten und eine dysregulierte Immunhomöostase gekennzeichnet sind. Als Signal-Knotenpunkt, der Rezeptorsignale mit aktinabhängigen Prozessen verbindet, ist DOCK8 ein breit untersuchter Faktor in der Leukozytenbiologie, in Wirt–Pathogen-Interaktionen und in der Entwicklung von Immunzellen.
DOCK 8 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DOCK8-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DOCK8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DOCK8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DOCK8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.