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CtBP2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419868-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CtBP2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419868-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Mouse Ctbp2 kodiert das C-terminal bindende Protein 2 (CtBP2), einen NADH-sensitiven transkriptionellen Koregulator, der den zellulären Stoffwechselzustand mit Chromatin-Remodeling und Genexpression verknüpft. CtBP2 assoziiert mit DNA-bindenden Transkriptionsfaktoren und Korepressor-Komplexen, um Histondeacetylierung und andere epigenetische Mechanismen zu modulieren, die Differenzierung, Zellzyklusprogramme und stressresponsive Transkription steuern. Durch die Regulation von Signalwegen wie Wnt/β-Catenin, TGF-β und Notch-assoziierten Transkriptionsausgängen beeinflusst CtBP2 die epithelial–mesenchymale Transition, die neuronale Entwicklung und synaptische Gen-Netzwerke. Eine dysregulierte CTBP2-Aktivität und ein verändertes Korepressor-Gleichgewicht wurden mit krankheitsrelevanten Phänotypen in Verbindung gebracht, darunter Tumorprogression, neuroentwicklungsbedingte Defekte und metabolische Anpassung in proliferierenden Zellen.
CtBP2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Ctbp2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Ctbp2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Ctbp2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Ctbp2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.