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cPLA2 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-422284-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
cPLA2 CRISPR Activation Plasmid (m2) | sc-422284-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Pla2g4a kodiert die zytosolische Phospholipase A2 (cPLA2), ein Ca2+-abhängiges, durch Phosphorylierung reguliertes Enzym, das Membranphospholipide selektiv hydrolysiert und dabei Arachidonsäure sowie Lysophospholipide freisetzt. Dieser Schritt liefert Substrat für die Cyclooxygenase- und Lipoxygenase-Wege, prägt die Eicosanoidproduktion und die nachgeschaltete inflammatorische und immunologische Signalübertragung. Die cPLA2-Aktivität ist mit der MAPK/ERK-Signalgebung, Ca2+-Flüssen und der Membrantransportdynamik verknüpft und beeinflusst dadurch Zytokinantworten, oxidativen Stress und die Barrierefunktion. Eine fehlregulierte PLA2G4A/cPLA2-Signalgebung wurde mit inflammatorischer Pathobiologie, metabolischen Stressantworten und neuroinflammatorischen Prozessen in Verbindung gebracht und stellt damit einen geeigneten Knotenpunkt für mechanistische Studien in Mausmodellen dar.
cPLA2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Pla2g4a-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
cPLA2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Pla2g4a-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Pla2g4a-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen cPLA2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Pla2g4a-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von cPLA2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des cPLA2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Pla2g4a-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.