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CaMKV CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404961-ACT | 20 µg | $397.00 |
CAMKV kodiert CaMKV (Ca2+/Calmodulin-abhängige Proteinkinase‑ähnlich), ein atypisches Mitglied der CaMK-Familie, das an der neuronalen Signalübertragung und der aktivitätsabhängigen Regulation der Genexpression beteiligt ist. CaMKV wurde mit calcium-/calmodulinabhängigen Prozessen in Verbindung gebracht, die synaptische Plastizität, Neuritenausbildung und Zytoskelettdynamik beeinflussen und dabei vorgelagerte Calciumflüsse mit nachgelagerten Transkriptionsprogrammen verknüpfen. Eine fehlregulierte CAMKV-Expression oder -Signalgebung wurde mit neuroentwicklungsbezogenen und neuropsychiatrischen Phänotypen assoziiert, was CAMKV für die Untersuchung molekularer Mechanismen relevant macht, die neuronale Konnektivität und Erregbarkeit prägen. Humanes CAMKV ist daher ein nützliches Ziel, um calciumabhängige Signalwege in neuronalen Modellen und verwandten zellulären Systemen zu analysieren.
CaMKV Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CAMKV-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CaMKV Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CAMKV-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CAMKV-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CaMKV-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CAMKV-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CaMKV-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CaMKV-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CAMKV-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.