



Informacoes sobre ordens
| Nome do Produto | Numero de Catalogo | UNID | Preco | Qde | FAVORITOS | |
BPAG1 Plasmídeo duplo de Nickase (h) | sc-403388-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
BPAG1 Plasmídeo duplo de Nickase (h2) | sc-403388-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Dystonin (DST), também conhecido como BPAG1, codifica uma grande proteína ligadora do citoesqueleto da família das plaquinas, que conecta os filamentos intermédios à actina, aos microtúbulos e a complexos juncionais associados à membrana. Em contextos epiteliais e neuronais, o BPAG1 sustenta a integridade dos hemidesmossomas, a adesão célula–matriz e a organização do citoesqueleto, influenciando assim a polaridade celular, a migração e a resistência ao stress mecânico. As isoformas de DST participam em processos coordenados de ligação cruzada do citoesqueleto e de tráfego intracelular que afetam a arquitetura dos tecidos e a estabilidade axonal. A disrupção genética ou a alteração da expressão de DST tem sido associada a fenótipos cutâneos com formação de bolhas e a características neurodegenerativas, tornando-o um alvo relevante para estudar mecanismos de falha do citoesqueleto e a biologia das junções celulares.
BPAG1 O Plasmídeo de Nickase Dupla (h) consiste num par de plasmídeos combinados, concebidos para a edição de alta especificidade do locus DST em linhas celulares human. Cada plasmídeo expressa uma nickase Cas9 D10A e um sgRNA distinto que tem como alvo cadeias de ADN opostas dentro de DST. Quando direcionadas para locais adjacentes em cadeias de ADN opostas, as duas nickases geram cortes deslocados numa única cadeia que, em conjunto, produzem uma quebra escalonada de cadeia dupla, exigindo uma atividade coordenada no alvo por parte de ambas as guias. A quebra de ADN resultante é resolvida por vias de reparação celular endógenas, mais frequentemente através da junção de extremidades não homólogas (NHEJ), levando a inserções ou deleções que perturbam a função DST. Ao exigir o envolvimento de dois sgRNA no locus alvo, a abordagem de dupla nickase aumenta a especificidade da edição e fornece uma estratégia CRISPR complementar para aplicações em que se deseja um controlo adicional sobre a precisão do direcionamento.
Para apoiar a identificação eficiente das células editadas, um plasmídeo codifica GFP para visualização fluorescente das populações transfectadas, enquanto o plasmídeo complementar transporta um gene de resistência à puromicina para seleção antibiótica. Em conjunto, estas características apoiam o enriquecimento eficiente das populações co-transfectadas e simplificam a validação dos clones com DST interrompido.
Apenas para uso em investigação. Não se destina a uso diagnóstico ou terapêutico.