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AMPK alpha 2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400277-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
AMPK alpha 2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400277-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
PRKAA2 kodiert die katalytische α2‑Untereinheit der AMP‑aktivierten Proteinkinase (AMPK), einem zentralen Sensor des zellulären Energiezustands, der durch AMP/ADP sowie durch übergeordnete Kinasen wie LKB1 aktiviert wird. AMPKα2 koordiniert die metabolische Anpassung, indem sie Signalwege reguliert, die die Glukoseaufnahme, die Fettsäureoxidation, die Autophagie und die mitochondriale Biogenese steuern, und zugleich anabole Signalgebung über Zielstrukturen einschließlich mTORC1 bremst. In menschlichen Zellen trägt die PRKAA2‑abhängige Signalübertragung zu Stressantworten bei Nährstoffmangel und Hypoxie bei und prägt Transkriptionsprogramme, die Proliferation und Überleben beeinflussen. Eine Fehlregulation der AMPKα2‑Aktivität wurde mit Stoffwechselstörungen und krebsassoziiertem metabolischem Remodeling in Verbindung gebracht, wodurch PRKAA2 ein häufig untersuchter Knotenpunkt in Netzwerken der Energiehomöostase und Stresssignalgebung ist.
AMPK alpha 2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des PRKAA2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von PRKAA2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die PRKAA2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit PRKAA2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.