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ADAM28 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404031-ACT | 20 µg | $397.00 |
ADAM28 kodiert eine membranverankerte Metalloprotease der ADAM‑Familie (a disintegrin and metalloprotease), die über ihre Disintegrin- und Proteasedomänen das Ectodomain‑Shedding sowie Zell‑Zell‑ bzw. Zell‑Matrix‑Interaktionen vermittelt. Durch die Regulation der Verfügbarkeit von Oberflächenrezeptoren, Adhäsionsmolekülen und löslichen Mediatoren beeinflusst ADAM28 proteolyseabhängige Signalwege, den Leukozytenverkehr und den Gewebeumbau. Die Expression von ADAM28 wurde in Zusammenhängen untersucht, die die Rekrutierung inflammatorischer Zellen und das Remodeling des Tumormikromilieus betreffen, wobei eine veränderte Proteaseaktivität die Adhäsionsdynamik und die Zytokinantwort verschieben kann. Als oberflächenassoziierte Protease wird ADAM28 häufig in Signalwegen betrachtet, die mit der Regulation der extrazellulären Matrix, Immun-Signalen und migratorischen Phänotypen verknüpft sind.
ADAM28 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ADAM28-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
ADAM28 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ADAM28-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ADAM28-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen ADAM28-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ADAM28-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von ADAM28-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des ADAM28-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ADAM28-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.