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A-Raf Double Nickase Plasmid (h) | sc-401799-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
A-Raf Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401799-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ARAF kodiert die Serin/Threonin-Kinase A‑Raf, ein Mitglied der RAF-Familie, das aktiviertes RAS mit der MAPK/ERK-Signalkaskade verbindet. Durch regulierte Aktivierung und Dimerisierung trägt A‑Raf zur Phosphorylierung von MEK und zur nachgeschalteten Steuerung von Programmen der Zellproliferation, -differenzierung und des Zellüberlebens bei. Die ARAF-Aktivität steht in Wechselwirkung mit der Signalübertragung von Wachstumsfaktorrezeptoren und kann die Feedback-Regulation innerhalb des ERK-Wegs sowie das Cross-Talk mit der PI3K–AKT-Signalgebung beeinflussen. Eine fehlregulierte RAF–MEK–ERK-Signalgebung, einschließlich einer veränderten Nutzung von RAF-Isoformen, ist breit relevant für onkogene Signalnetzwerke und für die Modellierung kontextabhängiger Signalweg-Abhängigkeiten in humanen Zellen.
A-Raf Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ARAF-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ARAF abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ARAF-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ARAF-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.