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WISP-1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423705-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
WISP-1 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423705-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Wisp1 (WISP-1; CCN4) kodiert ein sezerniertes, matrixassoziiertes Protein, das Signale aus der extrazellulären Matrix mit Wachstumsfaktor-Signalwegen verknüpft und so Zelladhäsion, Migration und Proliferation in Mausgeweben reguliert. WISP-1 wird häufig mit der Wnt/β-Catenin-Signalkaskade in Verbindung gebracht und interagiert mit integrinvermittelten Signalwegen, die während der Entwicklung sowie bei Gewebeumbauprozessen die Umgestaltung des Zytoskeletts, Überlebensprogramme und transkriptionelle Antworten beeinflussen. Eine veränderte WISP-1-Expression wurde in krankheitsrelevanten Modellen mit fehlregulierten fibrotischen Reaktionen, abnormaler angiogener und inflammatorischer Signalgebung sowie dem Umbau des Tumormikromilieus in Verbindung gebracht. Diese Eigenschaften machen WISP-1 zu einem nützlichen Ziel, um das Zusammenspiel zwischen ECM und Signaltransduktion in der Stromabiologie und bei krankheitsrelevanten Umbauprozessen zu untersuchen.
WISP-1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Wisp1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Wisp1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Wisp1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Wisp1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.