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UTY CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-416327-ACT | 20 µg | $397.00 |
UTY (ubiquitär transkribiertes Tetratricopeptid-Repeat-Gen, Y-chromosomal) kodiert ein nukleäres, chromatinassoziiertes Protein der KDM6-Familie, das an der epigenetischen Steuerung von Transkriptionsprogrammen beteiligt ist. Obwohl seine katalytische Demethylaseaktivität im Vergleich zu Paraloggenen vermindert ist, wird UTY mit der Regulation von Histon-H3K27-Methylierungszuständen, Chromatin-Remodeling und Entwicklungsnetzwerken der Genexpression in Verbindung gebracht. UTY-abhängige Chromatinprozesse überschneiden sich mit der Festlegung von Zelllinien, der Differenzierung von Immunzellen und der Aufrechterhaltung von Transkriptionszuständen in proliferierenden Zellen. Veränderte UTY-Dosierung oder eine Y-chromosomengebundene Regulation wurde im Kontext geschlechtsabhängiger molekularer Phänotypen und krankheitsrelevanter Transkriptionsdysregulation untersucht, einschließlich krebsassoziierter epigenomischer Veränderungen.
UTY Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen UTY-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
UTY Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des UTY-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der UTY-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen UTY-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native UTY-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von UTY-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des UTY-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem UTY-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.