Date published: 2025-9-6

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Tris acetate salt (CAS 6850-28-8)

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Alternative Namen:
Tris(hydroxymethyl)aminomethane acetate
Anwendungen:
Tris acetate salt ist ein Puffersalz, das hauptsächlich in der Elektrophorese und Chromatographie verwendet wird.
CAS Nummer:
6850-28-8
Reinheit:
≥99%
Molekulargewicht:
181.19
Summenformel:
C6H15NO5
Ausschließlich für Forschungszwecke. Nicht Geeignet für Verwendung in Diagnostik oder Therapie.
* Schauen Sie auf das Analysezertifikat (CoA), um die genauen Daten (inkl. Wassergehalt) Ihrer Produktionscharge (Lot) zu sehen.

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Trisacetatsalz, ein Derivat von Tris(hydroxymethyl)aminomethan in Kombination mit Essigsäure, dient als wichtiges Puffermittel in der biochemischen und molekularbiologischen Forschung. Trisacetat ist für seine effektive Pufferkapazität im leicht sauren bis neutralen pH-Bereich bekannt und wird häufig in der DNA- und RNA-Gelelektrophorese verwendet, wo es - oft zusammen mit EDTA - Teil des Elektrophoresepuffersystems ist, um einen konsistenten pH-Wert aufrechtzuerhalten und die effiziente Migration der Nukleinsäuren durch die Gele zu erleichtern. Dieser Puffer wird besonders wegen seiner schonenden Eigenschaften geschätzt, die die Schädigung biologischer Moleküle minimieren, so dass er sich für Enzymtests und Proteinreinigungsverfahren eignet. Bei diesen Anwendungen trägt Trisacetat zur Stabilisierung der Enzymaktivität bei, indem es optimale pH-Bedingungen aufrechterhält und die Solubilisierung und Stabilisierung von Proteinen unterstützt, was für eine detaillierte Proteinanalyse entscheidend ist. Die Fähigkeit der Verbindung, ein stabiles Umfeld für eine Vielzahl biochemischer Reaktionen zu schaffen, macht sie unentbehrlich in Umgebungen, in denen eine präzise pH-Kontrolle unerlässlich ist, was sowohl die Genauigkeit als auch die Reproduzierbarkeit von Versuchsergebnissen in Forschungslabors mit Schwerpunkt Molekularbiologie und Biochemie verbessert.


Tris acetate salt (CAS 6850-28-8) Literaturhinweise

  1. Verbesserungen der Gelzusammensetzung und der elektrophoretischen Bedingungen für eine breit angelegte Mutationsanalyse mittels denaturierender Gradientengelelektrophorese.  |  Hayes, VM., et al. 1999. Nucleic Acids Res. 27: e29. PMID: 10497279
  2. Grenzflächenmodellierung des biomolekularen Transports.  |  Allison, SA. 2001. Biophys Chem. 93: 197-213. PMID: 11804726
  3. Die Mobilität der DNA in freier Lösung in Tris-Acetat-EDTA-Puffern verschiedener Konzentrationen, mit und ohne NaCl-Zusatz.  |  Stellwagen, E. and Stellwagen, NC. 2002. Electrophoresis. 23: 1935-41. PMID: 12116139
  4. Geschichte und Grundsätze der leitfähigen Medien für die Standard-DNA-Elektrophorese.  |  Brody, JR. and Kern, SE. 2004. Anal Biochem. 333: 1-13. PMID: 15351274
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  8. Fraktionierung von hochmolekularer Ribonukleinsäure durch Polyacrylamid-Gelelektrophorese.  |  Loening, UE. 1967. Biochem J. 102: 251-7. PMID: 5339944
  9. Scheinbare Porengröße von Polyacrylamidgelen: Vergleich von Gelen, die in Tris-Acetat-EDTA- und Tris-Borat-EDTA-Puffer gegossen und gelaufen sind.  |  Stellwagen, NC. 1998. Electrophoresis. 19: 1542-7. PMID: 9719523
  10. Verbleibende Gegenionen können einen großen Proteinkomplex in der Gasphase stabilisieren[J].  |  Freeke J, Robinson C V, Ruotolo B T. 2010,. International Journal of Mass Spectrometry,. 298(1-3):: 91-98.

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