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TRIP12 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-420729 | 20 µg | $397.00 |
Trip12 kodiert TRIP12, eine HECT‑Typ‑E3‑Ubiquitin‑Ligase, die den Transfer von Ubiquitin katalysiert und dadurch Proteinabbau sowie die Stärke von Signalwegen reguliert. In Mauszellen trägt TRIP12 zur ubiquitinabhängigen Proteostase bei und beeinflusst Prozesse wie DNA‑Schadensantworten, transkriptionelle Regulation und Zellzykluskontrolle, indem es die Stabilität zentraler regulatorischer Faktoren mitbestimmt. Als Bestandteil des Ubiquitin‑Proteasom‑Systems kann TRIP12‑vermittelte Ubiquitinierung die Anpassung an Stress und die Aufrechterhaltung der genomischen Integrität beeinflussen. Eine veränderte Aktivität von Ubiquitin‑Ligasen ist häufig mit fehlreguliertem Wachstum und neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen verknüpft, was Trip12 zu einem relevanten Ziel für mechanistische Studien der zellulären Homöostase und krankheitsassoziierter Signalwege macht.
Das TRIP12 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Trip12-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Trip12-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Trip12 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die TRIP12-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Trip12-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der TRIP12-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.