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TRIM8 Double Nickase Plasmid (m) | sc-429995-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TRIM8 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-429995-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Trim8 kodiert TRIM8, eine RING-Typ-E3-Ubiquitin-Ligase aus der TRIM-Familie, die über ubiquitinabhängige Mechanismen die Proteinstabilität und Signalübertragung reguliert. In Mauszellen wird TRIM8 mit der Modulation zentraler Stress- und Entzündungssignalwege in Verbindung gebracht, darunter p53-assoziierte Antworten, NF-κB-Signalgebung und Outputs des JAK/STAT-Signalwegs, wodurch Proliferation, Apoptose und zytokingesteuerte Transkriptionsprogramme beeinflusst werden. Aufgrund dieser Funktionen wird TRIM8 häufig im Zusammenhang mit Genomintegrität, Regulation der angeborenen Immunität und Entscheidungen über das Zellschicksal untersucht. Eine fehlregulierte TRIM8-Aktivität wurde mit pathologischen Prozessen assoziiert, die mit aberranter Entzündungssignalgebung und einer veränderten Funktion von Tumorsuppressor-Netzwerken einhergehen, was seine Relevanz für die Forschung in Krankheitsmodellen unterstreicht.
TRIM8 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Trim8-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Trim8 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Trim8-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Trim8-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.