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TNF-R1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400206-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TNF-R1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400206-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TNFRSF1A kodiert TNF‑R1, einen ubiquitär exprimierten Rezeptor, der TNF‑α bindet und dadurch eine Signaltransduktion auslöst, die Entzündung, Zellüberleben und den programmierten Zelltod steuert. Die Ligandenbindung fördert die Bildung rezeptorassoziierter Komplexe, die kanonische NF‑κB‑ und MAPK‑Signalwege aktivieren können, um Zytokin‑ und Stressantwort‑Genprogramme zu induzieren, oder sich – abhängig vom jeweiligen regulatorischen Kontext – in Richtung einer caspaseabhängigen Apoptose und Nekroptose verschieben. Durch diese Verzweigungen der Signalwege beeinflusst TNF‑R1 die Aktivierung der angeborenen Immunantwort, die Gewebehomöostase sowie Endothel‑ und Epithelbarriere‑Reaktionen. Eine dysregulierte TNFRSF1A‑Signalgebung und Varianten, die die Rezeptorfunktion beeinträchtigen, wurden mit autoinflammatorischen Phänotypen und umfassenderen Mechanismen entzündlicher Erkrankungen in Verbindung gebracht, weshalb TNFRSF1A häufig als Ziel dient, um TNF‑getriebenes Netzwerkverhalten zu analysieren.
TNF-R1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TNFRSF1A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TNFRSF1A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TNFRSF1A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TNFRSF1A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.