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TMTC3 Double Nickase Plasmid (h) | sc-409056-NIC | 20 µg | $410.00 |
TMTC3 kodiert ein im endoplasmatischen Retikulum (ER) lokalisiertes transmembranöses Tetratricopeptid-Repeat-Protein, das an der Proteinkontrolle (Protein-Quality-Control) und der Reifung von Glykoproteinen beteiligt ist, einschließlich der Regulation der O-Mannosylierung ausgewählter Substrate. Über seine Rolle in der ER-Proteostase beeinflusst TMTC3 die Faltung, den Transport und die Stabilität von Membran- und sekretorischen Proteinen und greift dabei in Signalwege wie die ER-Stress-Signalübertragung und die Modulation der Unfolded-Protein-Response (UPR) ein. Genetische und funktionelle Studien haben Störungen von TMTC3 mit neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen und einer veränderten zellulären Homöostase in Verbindung gebracht, was mit einer beeinträchtigten Proteinverarbeitung vereinbar ist. Daher wird TMTC3 häufig in Modellen der neuronalen Entwicklung, der Reifung von Adhäsions- und Signalrezeptoren sowie in ER-assoziierten Signalwegen untersucht, die für Mechanismen angeborener und neurologischer Erkrankungen relevant sind.
TMTC3 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TMTC3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TMTC3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TMTC3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TMTC3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.