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T-type Ca++ CP α1G CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-418331-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
T-type Ca++ CP α1G CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-418331-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
CACNA1G kodiert die porenbildende α1G-Untereinheit des Cav3.1‑T‑Typ‑Ca++‑Kanals, einer bei niedrigen Spannungen aktivierbaren Leitfähigkeit, die Fensterströme und rhythmische Membrandepolarisationen unterstützt. Durch die Formung intrazellulärer Calciumtransienten nahe dem Ruhepotenzial beeinflusst Cav3.1 die neuronale Erregbarkeit, die Schrittmacheraktivität sowie calciumabhängige Signalkaskaden, die Membranaktivität mit Genregulation und synaptischer Funktion koppeln. Die Aktivität von CACNA1G ist in umfassendere Netzwerke der Ca2+-Homöostase und Erregbarkeitswege eingebunden, einschließlich calciumabhängiger Kinasen und transkriptioneller Programme, die auf das Membranpotenzial reagieren. Eine fehlregulierte Funktion von T‑Typ‑Calciumkanälen wurde in der Literatur mit veränderten thalamokortikalen Oszillationen und Erregbarkeitsphänotypen in Verbindung gebracht, die für Mechanismen neurologischer und neuropsychiatrischer Erkrankungen relevant sind.
T-type Ca++ CP α1G Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CACNA1G-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
T-type Ca++ CP α1G Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CACNA1G-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CACNA1G-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen T-type Ca++ CP α1G-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CACNA1G-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von T-type Ca++ CP α1G-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des T-type Ca++ CP α1G-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CACNA1G-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.