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SWAP-70 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403465-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das humane Gen SWAP70 kodiert SWAP-70, einen phosphatidylinositolbindenden Signaladapter, der nachgeschaltet der PI3K an aktivierte Membranen rekrutiert wird und das von GTPasen der Rho-Familie abhängige Remodeling des Aktinzytoskeletts unterstützt. SWAP-70 trägt zur Aktivierung, Adhäsion und Migration von Immunzellen bei, indem es die Zytoskelettdynamik und rezeptorvermittelte Signalgebung in Prozessen wie B‑Zell-Antworten, antigenabhängigem Trafficking und phagozytischen Funktionen koordiniert. Eine Fehlregulation SWAP70-assoziierter Signalwege wurde im Zusammenhang mit Immunfunktionsstörungen sowie mit Motilität/Invasion von Tumorzellen untersucht, wobei verändertes Aktin-Remodeling das Zellverhalten beeinflussen kann. Modelle zur Perturbation von SWAP70 ermöglichen mechanistische Studien der PI3K–Rac/Rho-Signalgebung, des Membrantraffickings und zytoskelettkontrollierter Phänotypen, indem mithilfe von Geneditierung Effekte auf Migration, Morphologie und stimulusabhängige Signaloutputs gezielt analysiert werden.
SWAP-70 Das Double-Nickase-Plasmid (h2) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SWAP70-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SWAP70 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SWAP70-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SWAP70-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.