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StARD9 Double Nickase Plasmid (h) | sc-407328-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
StARD9 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-407328-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
STARD9 kodiert ein mitotisches, kinesinassoziiertes Protein, das an der Funktion von Centrosom und Spindelapparat beteiligt ist und die Organisation der Mikrotubuli sowie die korrekte Chromosomentrennung während der Zellteilung unterstützt. Die Aktivität von StARD9 steht mit der Progression des Zellzyklus und der Kontrolle des mitotischen Checkpoints in Zusammenhang – Prozesse, die bei proliferativen Erkrankungen häufig fehlreguliert sind. Eine veränderte Expression oder Funktion von STARD9 wurde mit Phänotypen genomischer Instabilität in Verbindung gebracht, was es zu einem relevanten Ziel für die Untersuchung von Mechanismen macht, die Spindeldynamik mit Aneuploidie koppeln. In humanen Zellmodellen bietet die Perturbation von StARD9 eine Strategie, um mitosegekoppelte Signalnetzwerke und Stressantworten zu untersuchen, die die Zellviabilität beeinflussen.
StARD9 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des STARD9-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von STARD9 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die STARD9-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit STARD9-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.