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SPEC1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-410599-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen **CDC42SE1** kodiert **SPEC1** (CDC42 small effector protein 1), einen mit **Cdc42** interagierenden Effektor, der dazu beiträgt, die Signalübertragung von **Rho-GTPasen** mit dem Umbau des Zytoskeletts und der **Zellpolarität** zu koppeln. Durch die Modulation der **Aktin-Dynamik** und der Organisation von Zellkontakten kann SPEC1 Prozesse wie **gerichtete Migration**, die Bildung von **Membranprotrusionen** und die **epitheliale Architektur** beeinflussen. Diese Signalachse überschneidet sich mit Signalwegen, die **Adhäsion** und **Motilität** steuern, einschließlich von Rho-Familien-GTPase-regulierten Netzwerken, die Zellmorphologie und Gewebeorganisation prägen. Eine Fehlregulation von Cdc42-Effektorprogrammen, einschließlich veränderter **CDC42SE1**-Expression, wird häufig im Kontext abweichender Migrations- und Invasionsphänotypen untersucht, die für die Krebsbiologie und andere Störungen der epithelialen Integrität relevant sind.
SPEC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CDC42SE1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SPEC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CDC42SE1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CDC42SE1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SPEC1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CDC42SE1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SPEC1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SPEC1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CDC42SE1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.