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SMYD3 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-427513 | 20 µg | $397.00 | |||
SMYD3 HDR Plasmid (m) | sc-427513-HDR | 20 µg | $445.00 |
Smyd3 kodiert SMYD3, eine Lysin-Methyltransferase mit SET- und MYND-Domäne, die über Histonmethylierung den Chromatinzustand und die Gen-Transkription reguliert, einschließlich einer Aktivität, die mit der H3K4-Methylierung in Verbindung steht. Durch die Prägung epigenetischer Programme beeinflusst SMYD3 die Zellzyklusprogression, die Festlegung von Zelllinien sowie stressresponsive Transkriptionsnetzwerke und wurde mit Signalwegen in Zusammenhang gebracht, die Proliferation und Differenzierung modulieren. Eine dysregulierte SMYD3-Expression oder -Aktivität ist mit veränderten Transkriptionsmustern verbunden, die für onkogene Signalgebung und die Tumorbiologie relevant sind, was SMYD3 zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien der epigenetischen Kontrolle macht. In Mausmodellsystemen ermöglicht die Perturbation von SMYD3 die Untersuchung kontextabhängiger Chromatinregulation und der nachgeschalteten Umprogrammierung von Signalwegen.
SMYD3 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Smyd3-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Smyd3-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.
Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.
Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das SMYD3 HDR-Plasmid (m) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Smyd3 Zielstelle spezifisch sind.
Bei Co-Transfektion mit dem SMYD3 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m):
Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Smyd3-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
Dieser zweistufige Ansatz:
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.