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SET7/9 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-405251-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes SETD7 (SET7/9) ist eine Lysin-Methyltransferase mit SET-Domäne, die hauptsächlich Histon H3 an Lys4 monomethyliert (H3K4me1) und außerdem Nicht-Histon-Substrate modifizieren kann, wodurch der Chromatinzustand mit der transkriptionellen Kontrolle verknüpft wird. Über diese epigenetischen und proteinmethylierenden Aktivitäten beeinflusst SET7/9 den Verlauf des Zellzyklus, Differenzierungsprogramme, Stressantworten und die Regulation metabolischer Gene. SETD7-abhängige Signalwege überschneiden sich mit von zentralen Transkriptionsfaktoren und regulatorischen Knotenpunkten gesteuerten Pfaden und formen so kontextspezifische Genexpressionsprofile. Eine dysregulierte SETD7-Aktivität oder -Expression wurde mit veränderten Transkriptionsnetzwerken in Modellen der Krebsbiologie, Entzündung sowie kardiometabolischer Erkrankungen in Verbindung gebracht und macht SETD7 zu einem nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien zur epigenetischen Regulation.
SET7/9 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SETD7-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SET7/9 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SETD7-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SETD7-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SET7/9-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SETD7-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SET7/9-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SET7/9-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SETD7-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.