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Septin 5 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402514-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das humane Gen **SEPT5** kodiert Septin 5, ein GTP-bindendes Zytoskelettprotein, das sich zu hetero-oligomeren Septinfilamenten assemblieren kann und zur Membranorganisation, zum Vesikeltransport sowie zur räumlichen Kontrolle der Aktin- und Mikrotubuli-Dynamik beiträgt. Septin 5 ist besonders in neuronalen und sekretorischen Kontexten angereichert und wurde über Interaktionen mit SNARE-assoziierter Maschinerie mit Exozytose und Andocken synaptischer Vesikel in Verbindung gebracht. Von SEPT5 abhängige Septin-Gerüste beeinflussen Zellpolarität, Zytokinese und die Kompartimentierung an der Plasmamembran – Prozesse, die den intrazellulären Transport und die Signalweiterleitung prägen. Veränderte SEPT5-Expression oder Störungen am Lokus wurden in neuroentwicklungsbiologischen und neuropsychiatrischen Forschungskontexten sowie in krebsassoziierten Expressionsdatensätzen beschrieben, was seine Nutzung als mechanistischer Knotenpunkt in Studien zur Umgestaltung des Zytoskeletts und zur Sekretion unterstützt.
Septin 5 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SEPT5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SEPT5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SEPT5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SEPT5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.