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RIG-I Double Nickase Plasmid (h) | sc-400812-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RIG-I Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400812-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DDX58 kodiert RIG-I, eine zytosolische DExD/H-Box-RNA-Helikase, die virale RNA-Merkmale wie 5′-Triphosphat-Enden und kurze doppelsträngige RNA erkennt und dadurch angeborene Immun-Signalwege aktiviert. Nach Ligandenbindung interagiert RIG-I mit MAVS an den Mitochondrien und aktiviert TBK1/IKKε- sowie IKK-Komplexe, was die IRF3/IRF7- und NF-κB-abhängige Transkription von Typ-I-Interferonen und proinflammatorischen Zytokinen antreibt. Dieser Signalweg prägt die antivirale Restriktion, Zytokinprogramme und die Wechselwirkung mit Apoptose und Autophagie; eine fehlregulierte RIG-I-Signalgebung wurde mit interferongetriebenen Entzündungszuständen, Autoimmunität und Phänotypen des immunologischen Tumormikromilieus in Verbindung gebracht. RIG-I wird außerdem im Kontext der Pathogenerkennung, stressassoziierter Antworten mit Bezug zum RNA-Stoffwechsel und Mechanismen der Immunflucht durch Viren untersucht.
RIG-I Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DDX58-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DDX58 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DDX58-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DDX58-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.