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Recoverin CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404106-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane RCVRN kodiert Recoverin, ein in der Retina angereichertes EF-Hand-Ca2+-bindendes Protein, das als Ca2+-Myristoyl-Schalter zur Modulation der Phototransduktion fungiert. Bei Veränderungen des intrazellulären Ca2+ während der Lichtadaptation reguliert Recoverin die Aktivität der Rhodopsinkinase (GRK1) und prägt dadurch die Dynamik der Rhodopsinphosphorylierung sowie die Erholungskinetik in Stäbchen- und Zapfenphotorezeptoren. Über seine Rolle in der GPCR-Signalgebung, der Ca2+-Homöostase und der cGMP-abhängigen visuellen Signalübertragung unterstützt Recoverin eine normale retinale Signaltransduktion und Adaptation. Eine veränderte Recoverin-Expression oder -Immunreaktivität wurde mit Kontexten retinaler Dysfunktion in Verbindung gebracht, was RCVRN zu einem relevanten Ziel für mechanistische Studien der Photorezeptorbiologie und visueller Signalnetzwerke macht.
Recoverin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen RCVRN-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Recoverin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des RCVRN-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der RCVRN-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Recoverin-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native RCVRN-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Recoverin-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Recoverin-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem RCVRN-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.