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RBP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401569-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes RBP4 kodiert das Retinol-bindende Protein 4 (RBP), den wichtigsten Transporter von Vitamin A (Retinol) im Blutkreislauf und einen zentralen Determinanten für die Retinoidversorgung peripherer Gewebe. Durch die Regulation der Retinolverfügbarkeit beeinflusst RBP4 retinsäureabhängige Transkriptionsprogramme, die die epitheliale Differenzierung, die Immunmodulation und die Entwicklungsmusterbildung steuern, und es ist mit Prozessen der hepatischen Sekretion sowie des Lipidstoffwechsels verknüpft. Veränderte RBP4-Expression und eine gestörte Retinoid-Homöostase wurden mit metabolischer Dysregulation, Insulinresistenz und inflammatorischen Phänotypen in Verbindung gebracht, ebenso wie mit Aspekten der okulären und hepatischen Biologie, in denen der Vitamin-A-Fluss streng kontrolliert wird. RBP4 ist daher ein nützlicher Angriffspunkt, um Retinoid-Transportwege und nachgeschaltete genregulatorische Netzwerke in humanen Zellmodellen zu untersuchen.
RBP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen RBP4-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
RBP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des RBP4-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der RBP4-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen RBP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native RBP4-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von RBP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des RBP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem RBP4-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.