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Rb Double Nickase Plasmid (h) | sc-400116-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Rb Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400116-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RB1 kodiert das Retinoblastom-Protein (Rb), einen zentralen Tumorsuppressor, der den Übergang vom G1- in den S‑Phasen‑Zellzyklus bremst, indem er E2F-Transkriptionsfaktoren bindet und reprimiert und die für die DNA-Replikation erforderlichen Transkriptionsprogramme koordiniert. Die Rb-Aktivität wird dynamisch durch Phosphorylierung über Cyclin D–CDK4/6 und Cyclin E–CDK2 reguliert und integriert mitogene Signale mit Checkpoints, Chromatinregulation und zellulärer Differenzierung. Über Verknüpfungen mit DNA-Schadensantworten, Seneszenz und Apoptose trägt RB1 zur Aufrechterhaltung der genomischen Stabilität bei und kontrolliert die proliferative Kapazität. Eine Störung der RB1-Funktion tritt in vielen Krebsarten wiederholt auf und ist die definierende Läsion beim Retinoblastom, wodurch RB1 einen Schlüsselknoten in Signalwegen darstellt, die Onkogenese und Zellschicksalsentscheidungen steuern.
Rb Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RB1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RB1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RB1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RB1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.