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PDE6β CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-422166-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das murine Gen *Pde6b* kodiert die Beta-Untereinheit der cGMP-Phosphodiesterase 6 (PDE6β), einen zentralen Effektor der Phototransduktionskaskade in Stäbchen. In retinalen Stäbchen-Photorezeptoren hydrolysiert PDE6β cGMP nachgeschaltet der durch Licht aktivierten Rhodopsin–Transducin-Signalübertragung und reguliert dadurch die Aktivität zyklisch-nukleotidgesteuerter Kanäle, die Membranhyperpolarisation sowie calciumabhängige Adaptationsprozesse. Eine korrekte PDE6β-Funktion ist entscheidend für die Aufrechterhaltung der Photorezeptor-Homöostase und der Signaltreue und verknüpft dieses Enzym mit Studien zur sensorischen Transduktion, zum cGMP-Stoffwechsel und zur Biologie des Außensegments. Eine Fehlregulation oder ein Verlust der PDE6β-Aktivität wird in experimentellen Modellen erblicher Netzhautdegeneration breit genutzt und ermöglicht mechanistische Analysen von Photorezeptor-Stressantworten, synaptischem Remodeling und sehrelevanten Phänotypen.
PDE6β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Pde6b-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PDE6β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Pde6b-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Pde6b-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PDE6β-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Pde6b-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PDE6β-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PDE6β-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Pde6b-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.