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p70 S6 kinase β CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400409-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
p70 S6 kinase β CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400409-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Das humane RPS6KB2-Gen kodiert die p70-S6-Kinase β, eine Serin/Threonin-Kinase der AGC-Familie, die stromabwärts der PI3K–AKT–mTOR-Signalgebung wirkt und Nährstoff- sowie Wachstumsfaktorsignale mit Proteinsynthese und Zellwachstum koppelt. Durch die Phosphorylierung von Substraten, die an der Translationsinitiation und der Ribosomenbiogenese beteiligt sind, trägt p70-S6-Kinase β dazu bei, Zellgröße, Proliferation und metabolische Anpassung unter sich ändernden Umweltbedingungen zu regulieren. Eine fehlregulierte mTOR/S6K-Signalgebung wird häufig im Zusammenhang mit verändertem anabolem Stoffwechsel und Stressantworten bei Krebs und anderen proliferativen Erkrankungen untersucht, bei denen abnorme Translationskontrolle und Feedback-Signale den Output des Signalwegs umformen können. Die Aktivität von RPS6KB2 ist zudem relevant für Untersuchungen der Insulinsignalgebung, der zellulären Bioenergetik sowie der Wechselwirkungen mit MAPK- und autophagieassoziierten Prozessen.
p70 S6 kinase β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen RPS6KB2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
p70 S6 kinase β Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des RPS6KB2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der RPS6KB2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen p70 S6 kinase β-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native RPS6KB2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von p70 S6 kinase β-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des p70 S6 kinase β-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem RPS6KB2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.