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p47phox CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-417916-ACT | 20 µg | $397.00 |
NCF1 kodiert p47phox, eine zytosolische Organizer‑Untereinheit des NADPH‑Oxidase‑Komplexes (NOX2) von Phagozyten, die für den reizabhängigen Zusammenbau und die Aktivierung der Superoxidproduktion essenziell ist. Nach der Phosphorylierung transloziert p47phox an Membranen und koordiniert die Interaktionen zwischen p67phox, p40phox und dem membranständigen Cytochrom b558 (gp91phox/NOX2 und p22phox), wodurch während angeborener Immunantworten die Bildung reaktiver Sauerstoffspezies ermöglicht wird. Dieser oxidative Burst unterstützt die antimikrobielle Abwehr, Redox‑Signalgebung und die Modulation entzündlicher Signalwege und verknüpft die NCF1‑Aktivität mit der Funktion von Neutrophilen und Makrophagen. Eine veränderte NCF1/p47phox‑Funktion ist mit Immundefizienz‑Phänotypen wie der chronischen Granulomatose assoziiert und wurde im Kontext fehlregulierter Entzündung und Autoimmunität untersucht.
p47phox Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NCF1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
p47phox Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NCF1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NCF1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen p47phox-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NCF1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von p47phox-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des p47phox-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NCF1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.