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P2Y12 Double Nickase Plasmid (m) | sc-427818-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
P2Y12 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-427818-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen *P2ry12* kodiert den purinergen Rezeptor P2Y12, einen Gi-gekoppelten GPCR, der extrazelluläres ADP erkennt, um die cAMP-Signalübertragung zu dämpfen und nachgeschaltete PI3K–Akt- und MAPK-Antworten zu koordinieren. Im zentralen Nervensystem ist P2Y12 stark in Mikroglia angereichert, wo es als Reaktion auf purinerge Signale, die von gestressten oder geschädigten Zellen freigesetzt werden, die Motilität der Zellfortsätze, Chemotaxis und Überwachungs-/Surveillance-Verhalten reguliert. Eine P2Y12-abhängige Signalgebung beeinflusst die neuroimmune Kommunikation, den synaptischen Umbau und den Entzündungstonus, wodurch *P2ry12* zu einem häufig verwendeten molekularen Marker und funktionellen Knotenpunkt der Mikroglia-Biologie wird. Eine fehlregulierte purinerge Signalübertragung über P2Y12 wurde in Modellen von Neuroinflammation und Neurodegeneration mit veränderten Mikroglia-Aktivierungszuständen in Verbindung gebracht.
P2Y12 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des P2ry12-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von P2ry12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die P2ry12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit P2ry12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.